グルコースオキシダーゼ試験箱100管/48サンプル

測定手順：

1、酵素スケールは30 min以上予熱し、波長を450 nmに調整する。

2、試薬3の希釈：試薬3を蒸留水で50倍希釈し、どれだけ配合するか。（試薬三和蒸留水1：49希釈。

3、作動液の調製：試薬に100μlの試薬2を添加すると、十分に混合する。配合された試薬は4℃で1週間保存することができる。（使い捨て測定サンプルが少ない場合は、実際の使用量に応じて試薬1と試薬2を20 ml：0.1 mlの割合で混合して調製することができる）

4、試薬4本を蒸留水5 mlで溶解する（溶解後1週間以内に使い切る）。

5、サンプル測定（96ウェルプレートに次の試薬を順次添加）

特に注意：本製品は科学研究のためだけに使用され、人体の臨床直接検査に使用してはならない。

商品紹介：

凝固防止の注意点を選択：

①、各サンプルに加えた抗凝固剤の量は一致し、同時に採取した全血の量もできるだけ一致しなければならない。

②、抗凝固全血を集めた後、必ず軽く逆さまにして、十分に抗凝固して、一部の血液が抗凝固剤に接触していないことによる凝固を防止しなければならない。

③、抗凝固全血で収集した血漿は比較的に多い（1 mlの抗凝固全血エネルギーは0.4〜0.5 mlの血漿を分離する）、

④、抗凝集した血漿を冷凍保存した後、解凍時に綿状濁りが発生する可能性があり、あれば遠心分離して濁りを取り除いた後、測定に用いる必要がある。

操作手順:

実験開始前に、各試薬は室温まで平衡にしなければならない（試薬は直接37℃で溶解）、試薬または試料を希釈する場合は、すべて混合しなければならず、混合する場合はできるだけ泡が立たないようにしなければならない。実験前にサンプルの含有量を予測しなければならない。サンプル濃度が高すぎる場合、サンプルを希釈して、希釈後のサンプルがキットの検査範囲に合うようにして、計算時に相応の希釈倍数を乗算する。

1.サンプリング：それぞれ空白穴、標準穴、測定対象サンプル穴を設ける。ブランクホールにサンプル希釈液100μlを添加し、残りのホールにそれぞれ標準品または測定待ちのサンプル100μlを添加し、気泡がないように注意し、サンプルを添加して酵素スケールプレートの穴の底に添加し、できるだけ穴の壁に触れないようにし、軽く揺動して混合し、酵素スケールプレートに蓋または被膜を加え、37℃で120分間反応させた。実験結果の有効性を保証するために、毎回実験に新しい標準品溶液を使用してください。

2.液体を捨てて、乾かして、洗濯しなくてもいい。1ウェル当たり検査溶液A作動液100μl（使用前1時間以内に調製）を添加し、酵素スケールプレートに被膜を添加し、37℃で60分間反応した。

3.60分間インキュベートした後、孔内液体を捨て、乾燥させ、プレートを3回洗い、1回に1-2分間浸漬し、約400μl/1孔当たり、乾燥させる（孔内液体を軽くたたいて乾燥させることもできる）。

4.各ウェルに検査溶液B作動液（同検査A作動液）100μlを添加し、酵素スケールプレートに被膜37℃を加えて60分間反応させた。

5.60分間インキュベートした後、孔内液体を捨て、乾燥させ、プレートを5回洗い、毎回1-2分間浸漬し、350μl/1孔当たり、乾燥させる（孔内液体を軽くたたいて乾燥させることもできる）。

6.順番に基質溶液を1ウェル当たり90μl添加し、酵素スケールプレートに被膜を加えて37℃で遮光発色した（30分以内、この時肉眼で標準品の前3-4孔に明らかな勾配蘭色があり、後3-4孔勾配が明らかでなければ、すぐに終了する）。

7.順に各ウェルに終止溶液50μlを加え、反応を停止し、この時青色は黄色に立転した。終止液の添加順序はできるだけ基質液の添加順序と同じでなければならない。実験結果の正確性を保証するために、基質反応時間が来たらできるだけ早く終止液を添加しなければならない。

8.酵素結合器を用いて450 nm波長で各細孔の光密度（OD値）を逐次測定した。停止液を加えた直後に検査を行った。

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